Методика сдачи мазка из носа на эозинофилы. Мазок из носа и зева на стафилококки, эозинофилы: что это такое?

Когда и как берется мазок?

Эозинофилы, как и все лейкоциты, в отличие от остальных клеток, ведущих «оседлый» образ жизни, обладают способностью передвигаться с помощью псевдоподий (ложноножек). После выхода из костного мозга, где они образуются, эозинофильные лейкоциты переходят в кровеносные сосуды и циркулируют в них в течение нескольких часов.

Затем выходят из сосудов, раздвигая клетки сосудистой стенки, и передвигаются, в основном, по направлению легких, кожи и желудочно-кишечного тракта, где находятся до двух недель. Эозинофильные лейкоциты могут выходить на поверхность слизистой оболочки, поэтому их можно обнаружить в мазке из носа. Их основными функциями являются противоаллергическая и противопаразитарная.

Мазок из носа на эозинофилы чаще всего берется в тех случаях, когда трудно установить причину длительно протекающего ринита, который невозможно вылечить обычными средствами, то есть, для диагностики заболеваний, поражающих полость носа. Если насморк длится на протяжении недель и месяцев, это может свидетельствовать о его аллергической природе, что можно подтвердить с помощью этого мазка.

Повышенное количество эозинофилов может указывать на наличие аллергического ринита, лечение которого сильно отличается от терапии инфекционного насморка. Поэтому исследование мазка из носа на эозинофилы играет важную роль в диагностике аллергического насморка.

Подготовка к процедуре необходима для правильного забора клинического материала и получения достоверных результатов анализа. Перед проведением процедуры не рекомендуется применять:

  • противоаллергические;
  • сосудосуживающие;
  • антибактериальные лекарственные препараты местного действия.

Непосредственно перед забором материала надо очистить нос от слизи, тщательно сморкаться не желательно. После этого пациент должен слегка запрокинуть голову. Мазок из носа берут с помощью специального ватного тампона, который поочередно вводят в носовые ходы, плотно прижимают к слизистой оболочке и проворачивают его.

Затем проводят риноцитограмму – исследование полученного мазка под микроскопом. Предварительно мазок окрашивают. При этом гранулы эозинофильных лейкоцитов приобретают розовый цвет. Результатом исследования является описание всех находящихся в образце клеток, грибов, флоры и указание их количества. Риноцитограмма позволяет выявить увеличение численности эозинофилов, что может свидетельствовать об аллергической природе ринита.


Непосредственно перед забором материала надо очистить нос от слизи, тщательно сморкаться не желательно. После этого пациент должен слегка запрокинуть голову. Мазок из носа берут с помощью специального ватного тампона, который поочередно вводят в носовые ходы, плотно прижимают к слизистой оболочке и проворачивают его.

Где можно сдать мазок?

Риноцитограмму можно сделать как в условиях бюджетного медицинского учреждения, так и в частных клиниках и лабораториях. Цена мазка на эозинофилы зависит от самой клиники и региона, где проводится диагностика.

ГородСтоимость
МоскваОт 350 до 900 рублей
Санкт — ПетербургОт 200 до 600 рублей
НовосибирскОт 170 до 550 рублей
ЕкатеринбургОт 300 до 800 рублей
ХабаровскОт 300 до 600 рублей

Стафилококк может вызывать заболевания — хронический и острый ринит, гнойную ангину, гайморит, отит, хронический тонзиллит. Эти состояния характеризуется повышенным числом эозинофилов в мазке на флору в носу пациента. Золотистый стафилококк выделяет токсины, которые не чувствительны к пенициллиновой группе антибиотиков. Микроорганизм может стать причиной тяжелых заболеваний — остеомиелита, пневмонии, стафилококкового сепсиса.

Особенности процедуры

Мазок из носа на определение эозинофилов является абсолютно безболезненной процедурой. Его получают методом соскоба слизистых масс с заднего отдела нижней носовой раковины. Осуществляется эта манипуляция при помощи специальной ватной турунды. Далее полученный образец окрашивают для выявления точного количества эозинофилов, которые в процессе окрашивания приобретают розовый цвет. Их количество, в зависимости от имеющегося типа аллергена и стадии заболевания, может существенно отличаться в разных случаях.

Мазок из носа не является процедурой, к которой нужно тщательно готовиться. Достаточно придерживаться всего нескольких правил: до манипуляции не следует тщательно и долго высмаркиваться, а также использовать сосудосуживающие или антибактериальные препараты в виде назальных спреев или капель, а также мазей.

Показаниями к проведению подобной процедуры, как уже упоминалось выше, являются подозрения на наличие воспалительных заболеваний слизистой оболочки носа либо заболеваний аллергической природы.

Напишите моему чат-помощнику в Telegram ниже 👇

У взрослых

Нормой для взрослых пациентов являются следующие значения:

  • плоский и мерцательный эпителий: небольшое количество в поле зрения (п. з.);
  • лейкоциты: единичные в п. з.;
  • эритроциты, базофилы: отсутствуют;
  • дрожжевые грибки, патогенная кокковая и палочковидная микрофлора: отсутствует (в отдельных лабораториях допускается наличие единичных бактерий).

При исследовании лейкоформулы мазка важны такие показатели, как:

  • палочкоядерные нейтрофилы – 1-5%;
  • сегментоядерные нейтрофилы – 47-72%;
  • эозинофилы – 0,5-5%;
  • лимфоциты – 0-10%;
  • моноциты – 0-10%.

Соотношение и концентрация различных клеток в слизи носовых ходов изменяются в течение суток. Утром и вечером значения снижаются на 10-20%, а ночью повышаются на 25-30%.

  • палочкоядерные нейтрофилы – 1-5%;
  • сегментоядерные нейтрофилы – 47-72%;
  • эозинофилы – 0,5-5%;
  • лимфоциты – 0-10%;
  • моноциты – 0-10%.

Зачем назначается риноцитограмма?

Повышенные эозинофилы в соскобе или мазке со слизистой носа чаще всего наблюдаются при аллергическом рините, поэтому расшифровка этого исследования может подтвердить природу заболевания.

Терапия аллергического насморка в корне отличается от лечения инфекционного ринита, поэтому исследование мазка на эозинофилы имеет решающее значение. Анализ показан в том случае, когда насморк продолжается более 2 недель и возникает подозрение на отек слизистой оболочки носа или воспаление носовых пазух.

При исследовании слизистой носа анализируется цитологическая картина, представленная соотношением присутствующих в материале кровяных клеток и микроорганизмов. В состав здорового биоматериала обычно входят:

  • лейкоциты;
  • нейтрофилы;
  • лимфоциты;
  • макрофаги;
  • эритроциты;
  • дрожжевые грибы (в малых количествах);
  • стрептококки и стафилококки (в малых количествах);
  • слизь и другая микрофлора.

При определенных состояниях обнаруживаются эозинофилы, по количеству которых можно судить о наличии патологии.

При определенных состояниях обнаруживаются эозинофилы, по количеству которых можно судить о наличии патологии.

Показания к назначению анализа на трихомониаз

Трихомониаз не всегда вызывает клинически выраженное заболевание. У женщин до половины случаев заражения могут протекать бессимптомно. И выявляется это заболевание уже при обследовании по поводу осложнений — бесплодия, невынашивания беременности, сальпингоофорита, эндометрита [8] . Трихомонады увеличивают риск заражения ВИЧ-инфекцией и риск развития рака шейки матки [9] .

Из-за трихомониаза в половых путях и в уретре развивается воспалительная реакция, появляются микроскопические кровоизлияния. Это нарушает естественный защитный барьер и делает организм более восприимчивым к любым другим инфекциям. Лейкоциты и другие иммунные клетки мигрируют в очаг поражения, где создается их большая концентрация. А именно эти клетки в первую очередь поражает ВИЧ-инфекция. И от того, насколько высока их концентрация в месте соприкосновения с вирусом, зависит вероятность заражения [10] .

Симптомы трихомониаза у женщин — болезненность и дискомфорт внизу живота, которые усиливаются при половых контактах или при мочеиспускании. Появляются выделения желтоватого цвета из половых путей. Часто эти выделения имеют пенистый вид и неприятный запах.

У мужчин появляются слизистые выделения из уретры, боль во время мочеиспускания и половых контактов. Основными осложнениями этой инфекции для мужчин являются простатит и везикулит [11] . В одном из исследований было доказано, что именно трихомонада стала причиной хронического простатита у 29% пациентов [12] .

Российское общество дерматовенерологов и косметологов советует проводить диагностику трихомониаза [13] :

  • при воспалительных урологических и гинекологических заболеваниях;
  • при обследовании партнеров во время планирования беременности;
  • во время самой беременности;
  • перед урологическими и гинекологическими операциями;
  • при бесплодии;
  • после незащищенного полового контакта.

У мужчин появляются слизистые выделения из уретры, боль во время мочеиспускания и половых контактов. Основными осложнениями этой инфекции для мужчин являются простатит и везикулит [11] . В одном из исследований было доказано, что именно трихомонада стала причиной хронического простатита у 29% пациентов [12] .

Мазок на трихомониаз: обнаружение разрушенных клеток

Часто пациенты задаются вопросом о том, что значат разрушенные клетки в мазке на трихомониаз. На самом деле ничего сложного в этом показателе нет.

Читайте также:  Болезнь Паркинсона и паркинсонизм отличие. Опасность болезни Паркинсона в молодом возрасте

Трихомонада – типичный паразит, разрушающий нормальные клетки организма пациента. Естественно, оказавшись у пригодных для своего размножения условиях, она начинает уничтожать окружающие ткани.

Однако бесследное уничтожение – нечто невозможное. Из-за этого в мазке можно обнаружить фрагменты разрушенных клеток.

Врачи отмечают, что помимо фрагментов разрушенных клеток в результатах можно будет найти большое количество лейкоцитов. Это стандартная реакция организма на вторжение патогенных бактерий или простейших.

Лейкоциты обеспечивают иммунный ответ и являются типичными маркерами воспалительного процесса.

Помимо лейкоцитов в патологическом очаге также можно будет найти клетки эпителия в большом количестве. Они появляются из-за отшелушивания нормальных клеток от слизистых оболочек.


ПЦР – современная методика, относящаяся к молекулярно-генетическим методам. Исследование часто используют, чтобы подтвердить другие результаты анализов. Объясняется это тем, что анализ довольно дорогой, из-за чего использовать его в качестве скринингового нет возможности.

Сравнительный анализ лабораторных методов диагностики трихомониаза

Диагностика урогенитального трихомониаза основывается на обнаружении в исследуемом материале T.vaginalis. Диагноз не может быть поставлен исключительно на основании клинической картины, поскольку патогномоничные симптомы встречаются только у 2 % пациенток. Ещё в 1980 году были представлены результаты, свидетельствующие о том, что если диагноз трихомоноза устанавливать только на основании клинической картины, то 88 % инфицированных T.vaginalis женщин будет дан ложноотрицательный результат, а у 29 % неинфицированных диагноз был бы поставлен ошибочно [27]. В связи с тем, что клинические симптомы зачастую не отражают реальной картины заболевания, в обязательном порядке необходимо применение лабораторных методов диагностики трихомониаза, причем актуальна задача своевременного проведения исследования.

До настоящего времени в соответствии с протоколом ведения больных урогенитальным трихомониазом [14] основными методами обнаружения трихомонад являются микроскопический и культуральный, т.е. прямая идентификация возбудителя в мазке либо при культивировании на питательной среде. Но сложилась парадоксальная ситуация: при высоком уровне заболеваемости трихомонозом в России отсутствует производственный выпуск стандартных, разрешенных к применению препаратов и питательных сред для диагностики трихомониаза. В практике используют зарубежные среды, что влияет на стоимость исследования, или приготовленные по прописям в лабораториях, что влияет на воспроизводимость и достоверность получаемых результатов.

Диагностика трихомониаза существенно осложнилась в последние годы в связи с распространенностью нетипичных округлых форм T.vaginalis, обнаруживаемых при световой микроскопии витальных препаратов [3].


Первое in vitro культивирование T.vaginalis было проведено в 1915 г [36]. С тех пор разработаны разные варианты жидких и полужидких питательных сред для диагностики трихомониаза: среда Джонсона-Трасселя (СPLM), Даймонд среда, модифицированная Даймонд среда с добавлением тиогликолята натрия, среда Купферберг STS, среда Купферберг Difco, среда InPouch TV, среда TYM.

Когда после заражения сдают мазок трихомониаз

Так как микроскопия выявляет живые подвижные клетки простейших, необходимо, чтобы они успели внедриться в клетки урогенитального эндотелия, в соскобе которых их и ищут.

Чаще всего положительные ответы микроскопии могут быть получены уже спустя семь-десять дней от заражения.

Подготовка, которую требует мазок на трихомониаз, предполагает:

  • Отказ от противомикробных средств на десять дней.
  • Отказ от местных антисептиков на двое суток.
  • Воздержание от мочеиспускания в течение двух часов до забора материал из уретры.


Однако серология не является ведущей методикой в верификации диагноза трихомониаза.

Трихомониаз у женщин

Трихомониаз является одним из наиболее распространенных заболеваний мочеполового тракта и занимает первое место среди инфекций, передаваемых при интимной близости. По данным Всемирной Организации Здравоохранения (2016г.), от 10% населения земного шара поражено этим микробом.

  • урогенитальные
  • ротовые
  • кишечные

Урогенитальный трихомониаз: Лабораторная диагностика

Принципы лабораторной диагностики мочеполового трихомониаза

1. Лабораторные методы исследований

Материалом для паразитологических исследований у женщин служит отделяемое из цервикального канала, смыв из влагалища и осадок мочи; у мужчин — отделяемое из уретры, центрифугат свежевыпущенной мочи, секрет предстательной железы и эякулят.

Накануне обследования женщинам в течение суток не рекомендуется делать спринцеваний. Материал для анализа берется у них со слизистой заднего свода влагалища. В некоторых случаях исследуется отделяемое из цервикального канала.

Мужчинам перед обследованием предлагается в течение 3-4 ч воздерживаться от мочеиспусканий. Материал из уретры у них забирается с глубины 5-7 см специальным зондом или ложкой Фолькмана. Исследуется также секрет предстательной железы и эякулят. Если речь идет о хронической трихомонаднои инвазии, накануне исследования рекомендуется сделать провокацию гоновакциной, пирогеналом или неспецифическую (алкогольную).

1.1. Диагностика мочеполового трихомониаза

Диагностика мочеполового трихомониаза проводится путем микроскопии нативных препаратов, а также мазков, окрашенных метиленовым синим, по Романовскому-Гимзе и по модифицированному способу Грама. Для обнаружения трихомонад в нативных препаратах исследуется эякулят, секрет предстательной железы и осадок мочи у мужчин и смыв из влагалища у женщин.

Исследование нативных препаратов

Нативные препараты готовятся и исследуются сразу же после взятия материала. Если это невозможно, материал помещается в питательную среду, обеспечивающую кратковременное сохранение трихомонад, из расчета 1 мл исследуемого материала на 5 мл среды. Материал должен быть доставлен в лабораторию в теплом виде, сроки доставки материала не должны превышать 2 часов.

Для приготовления препарата на предметное стекло наносится капля теплого изотонического раствора хлорида натрия или раствора Рингера-Локка, с которой смешивается исследуемый материал. Взвесь накрывается покровным стеклом и микроскопируется при увеличении объектива 40 и окуляра 7 или 10.

При изучении нативного препарата особое внимание обращается на размеры и форму трихомонад, характер их движения, внутреннее содержимое клеток. В типичных случаях трихомонады обнаруживаются в виде подвижных образований грушевидной, реже овальной формы, размером в среднем от 13 до 17мкм. Характер их движений толчкообразный. Иногда удается заметить движение свободных жгутиков. Ядра трихомонад чаще не обнаруживаются или плохо различимы. Цитоплазма трихомонад обычно зернистая, чаще вакуолизирована.

Наиболее часто в настоящее время встречаются округлые или овальные, слабоподвижные или неподвижные (амастиготные) формы, которые следует отличать от лейкоцитов — сегментоядерных нейтрофилов, а также «голых ядер» эпителиоцитов и клеток молодого эпителия. В этом случае ведущими диагностическими критериями являются размеры трихомонад (чаще от 13 до 17 мкм), диффузная зернистость цитоплазмы, наличие в ней вакуолей, а также отсутствие хорошо различимого ядра.

Размеры лейкоцитов, имеющих округлую, реже овальную форму, как правило, не превышают 10 мкм. Цитоплазма лейкоцитов прозрачна, зернистость обычно не отмечается или слабо выражена. Сегментоядерные нейтрофилы обычно содержат хорошо различимое сегментированное ядро.

Голые ядра эпителиоцитов отличаются от трихомонад относительно толстой оболочкой (кариолеммой) и иным характером зернистости (отдельные глыбки хроматина). В клетках молодого эпителия, даже если они по размерам соответствуют трихомонадам и обладают зернистостью, всегда прослеживается четко различимое округлое или овальное ядро.

В некоторых случаях обнаруживаются амебоидные формы Т. vaginalis, длина тела которых достигала 30 мкм, а также атипично делящиеся (почкующиеся) клетки. Основными дифференциально-диагностическими критериями, отличающими атипичных трихомонад от клеток эпителия и лейкоцитов, служат наличие в цитоплазме этих простейших выраженной зернистости и вакуолей, а также отсутствие хорошо различимого ядра. Кроме того, они значительно крупнее, чем наиболее часто встречающиеся форменные элементы — сегментоядерные нейтрофилы. По размеру такие трихомонады могут быть сопоставимы с моноцитами, которые, в отличие от них, имеют четко выраженное ядро и никогда не встречаются в значительных концентрациях (несколько клеток в каждом поле зрения). При отсутствии типичных форм клеток трихомонад диагноз трихомониаза может считаться лишь предположительным и должен подтверждаться другими методами.

Исследование нативных препаратов обычно сочетают с микроскопией окрашенных мазков при увеличении объектива 90 (масляная иммерсия) и окуляра 7 или 10. Исследование окрашенных мазков несколько повышает вероятность обнаружения трихомонад за счет учета не только подвижных, но и неподвижных клеток. Кроме того, при просмотре окрашенных мазков лучше выявляется ряд вспомогательных признаков, которые косвенно указывают на наличие воспалительного процесса. К ним относятся скопление лейкоцитов на клетках плоского эпителия или вокруг них; большое количество слизи в мазках, наличие безъядерных клеточных образований и «голых» ядер эпителиальных клеток в цервикальном отделяемом и др.

Читайте также:  Косточки граната: можно ли есть гранат с косточками, польза и вред, а также прочие особенности[Народные рецепты]

Окраска метиленовым синим

Готовится 1% водный раствор метиленового синего. Высушенный на воздухе мазок фиксируется в течение 3 мин 96% этиловым спиртом, высушивается, после чего на него наносили на 1 мин раствор метиленового синего. Оставшийся краситель осторожно смывается слабой струей холодной воды и мазок высушивается.

Трихомонады в препарате имеют округлую или овальную форму, с интенсивно окрашенными в синий цвет ядрами; цитоплазма клеток светло-синяя, с нежной сетчатой структурой, вакуоли — бесцветны.

Окраска по Романовскому-Гимзе

Высушенный на воздухе мазок фиксируется смесью Никифорова (абсолютный этиловый спирт и эфир в соотношении 1:1). Раствор краски Романовского (азур-эозин) перед употреблением разводится дистиллированной водой в соотношении 0,3 мл на 10 мл воды и пипеткой наносится на горизонтально расположенные препараты на 30-40 минут. Затем они быстро промываются водой и высушиваются.

В окрашенных препаратах трихомонады имеют эксцентрично расположенное овальное пурпурно-фиолетовое ядро. Цитоплазма клеток окрашивается в светло-синий цвет, вакуоли остаются бесцветными, оболочка клеток четко заметна.

Окраска по модифицированному способу Грама

Для окраски используются следующие реактивы:

  1. 1% раствор генцианвиолета (1 г генцианвиолета растворяется в 100 мл кипящей дистиллированной воды, полученный раствор пропускается в горячем виде через бумажный фильтр).
  2. Водный раствор Люголя (2 г калия йодида растворяется в 300 мл дистиллированной воды, к полученному раствору добавляется 1 г чистого йода, после чего раствор фильтруется через бумажный фильтр).
  3. 3,96% этиловый спирт.
  4. 1% водный раствор нейтрального красного (1 г нейтрального красного растворяется в 100 мл дистиллированной воды и пропускается через бумажный фильтр).

Препарат накрывается полоской фильтровальной бумаги и заливается раствором генцианвиолета на 1-2 мин, после чего бумага снимается, препарат осторожно промывается водопроводной водой и на несколько секунд заливается раствором Люголя (до почернения мазка). Остаток раствора смывается, препарат обесцвечивается в 96% этиловом спирте до тех пор, пока с тонких участков препарата перестают стекать фиолетовые струйки. После смывания спирта водой препарат сразу же докрашивается в течение 3 мин раствором нейтрального красного, затем тщательно промывается и высушивается.

При микроскопии окрашенных мазков ядра клеток Т. vaginalis окрашиваются в фиолетовый цвет, цитоплазма — в красно-оранжевый цвет разной интенсивности. Метод окраски по Граму позволяет также диагностировать гонорею. В некоторых случаях для подтверждения диагноза трихомониаза используется ПЦР и культуральный метод.

Культуральный метод

Для диагностики мочеполового трихомониаза многие авторы используют культуральный метод. Существует достаточно большое количество питательных сред для культивирования трихомонад: среды СКДС, СДС-199 (Васильев М. М. и др., 1980; ЯцухаМ. В., 1982; Беднова В. Н. и др., 1981, 1982, 1985; Клименко Б. В., 1987, 2000), синтетическая среда Линстеда (Linstead D., 1981); среда Даймонда (Diamond L. S. 1987, 1995), среда «Vagicult» и др.

Нами Т. vaginalis выращивается на питательной среде СДС-199 М (Захаркив Ю. Ф. и др., 1998), которая имеет следующий состав:

  1. 100 мл солевого раствора (натрия хлорида 6,5 г, калия хлорида 0,14 г, кальция хлорида 0,12 г, натрия бикарбоната 0,2 г, 0,5 мл 0,2% раствора метиленового синего, дистиллированной воды до 1 л);
  2. 20 мл среды 199;
  3. 450 мг солянокислого цистеина;
  4. 30 мл сыворотки крови эмбрионов телят (без консерванта);
  5. 10 мл 20% раствора мальтозы;
  6. тиамина хлорида 5% и пиридоксина гидрохлорида 5% по 0,25 мл и аскорбиновой кислоты 5% — 0,5 мл на 100 мл среды;
  7. ампициллина натриевой соли 125 000 ЕД и гентамицина 40 000 ЕД на 100 мл среды.

Солевой раствор автоклавируется при 120°С в течение 30 минут, остальные ингредиенты добавляются стерильно после охлаждения среды. Антибиотики и витамины добавляются в питательную среду непосредственно перед использованием. Среда должна быть светло-зеленого цвета, прозрачной; показатель рН среды должен составлять 5,5-6,0.

Питательная среда объемом 4,5 мл помещается в стерильные пробирки и заливается слоем стерильного вазелинового масла толщиной 5 мм для создания анаэробных условий культивирования трихомонад. Посев производится пастеровской пипеткой путем помещения 0,5-1,0 мл исследуемого материала на дно пробирок.

Микроскопическое исследование производится через 48 и 96 часов после посева. При положительных результатах трихомонады дают придонный рост в виде плотного беловатого осадка, из которого пастеровской пипеткой берется материал для микроскопического исследования.

2. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к метронидазолу

В 1962 году S. Squires and J. A. Fadzean для определения чувствительности Т. vaginalis предложили метод серийных разведений метронидазола в жидкой питательной среде в анаэробных условиях. В качестве критерия оценки чувствительности они использовали минимальную ингибирующую концентрацию (MIC), под которой понимали наименьшую концентрацию препарата, вызывающую иммобилизацию у 100% клеток трихомонад. С помощью указанной методики авторам удалось показать, что все изученные ими штаммы Т. vaginalis, выделенные от больных трихомониазом, были чувствительны к метронидазолу в диапазоне концентраций препарата от 0,25 до 1 мкг/мл.

В 90-х гг. появились работы, свидетельствующие о возникновении и распространении штаммов Т. vaginalis, устойчивых к значительно более высоким концентрациям метронидазола: 50 мкг/мл (Borchardt К. А. et al, 1995), 32 мкг/мл (Debbia E. A. et al., 1996) и даже 250 мкг/мл (Таги Meri I. Т. et al., 1999). Тогда же было обосновано положение о том, что чувствительными к действию метронидазола в анаэробных условиях штаммами Т. vaginalis следует считать лишь те, для которых паразитоцидный эффект препарата наблюдается в концентрации более чем 15 мкг/мл (Muller M. et al., 1986, 1988; Тага Meri I. Т. et al., 1999). Процент резистентных к метронидазолу штаммов Т. vaginalis, выделенных в эти годы от больных трихомониазом, колебался от 5% (Narcisi Е. М., Secor W. Е., 1996) до 20% (Du Bouchet L. et al., 1997).

2.1. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к антипротозойным препаратам in vitro при использовании критерия иммобилизации трихомонад

Чувствительность штаммов Т. vaginalis к метронидазолу определяется с помощью метода серийных разведений препарата в питательной среде СДС-199 М. При использовании критерия оценки чувствительности штаммы Т. vaginalis, используемые для исследования, должны содержать не менее 90% подвижных клеток.

Среда заливается по 4,0 мл в стерильные пробирки, затем в них вносится 0,5 мл раствора, содержащего разные концентрации метронидазола (или другого антипротозойного препарата): от 0,25 до 1000 мкг/мл (1 мг/мл).

После этого в пробирки вносится 0,5 мл культуры возбудителя с заранее определенной концентрацией клеток (кл./мл). Контролем служит среда без препарата. Затем для создания анаэробных условий, необходимых для культивирования Т. vaginalis, в пробирки со средой вносится вазелиновое масло (толщина слоя — 0,5 мм). Пробирки с исследуемым материалом инкубируются в термостате при t = 37°С. Учет результатов производится через 48 и 96 часов после посева.

Чувствительность трихомонад к метронидазолу оценивается путем определения минимальной ингибирующей концентрации (MIC), вызывающей иммобилизацию всех клеток Т. vaginalis. К лекарственно-устойчивым относятся штаммы, у которых иммобилизация обнаруживается при концентрациях метронидазола (или другого антипротозойного препарата), превышающих 15 мкг/мл.

2.2. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к антипротозойным средствам in vitro при использовании критерия лизиса трихомонад при терапевтически эффективных концентрациях препаратов

В связи с широким распространением штаммов Т. vaginalis, устойчивых к метронидазолу, особенно среди больных хроническим мочеполовым трихомониазом, а также высокой частотой встречаемости амастиготных клеток, мы предлагаем оценивать чувствительность трихомонад к широкому спектру антипротозойных препаратов (производным 5-нитроимидазола пролонгированного типа действия (тинидазол, ниморазол, орнидазол и секнидазол), 4-аминохинолина (хлорохин, син. делагил) и нитрофурана (нифуратель, син. макмирор)) на основе оценки лизиса клеток трихомонад.

Читайте также:  Как осветлить волосы с помощью меда: рецепты и рекомендации

Чувствительность трихомонад оценивается при концентрациях препаратов, соответствующих терапевтически эффективным, т. е. создаваемым в сыворотке больного при пероральном назначении стандартных схем препарата. Среда разливается по 700 мкл в стерильные пробирки «Эппендорф», а затем в них вносится 200 мкл раствора димексида (диметилсульфоксида), содержащего антипротозойный препарат в концентрации, в 5 раз превышающей терапевтически эффективную. В контрольную пробирку помещается только 200 мкл димексида. Затем в пробирки осуществляется посев 100 мкл исследуемого материала. Учет результатов производится через 48 и 96 часов после посева.

К высокоустойчивым (RIII) относятся штаммы, концентрация клеток которых в опытных пробирках с антипротозойным препаратом составляла не менее 50% по сравнению с контролем; к умеренно устойчивым (RII) — от 25 до 50%, к низкоустойчивым (RI) — менее 25%. Воздействие препарата считается оптимальным при лизисе всех клеток трихомонад; в этом случае штамм относится к чувствительным (S). По нашему мнению, именно такой подход позволяет подобрать препарат или комбинацию препаратов для назначения рациональной схемы этиотропной терапии.

2.3. Определение чувствительности Trichomonas vaginalis к метронидазолу in vivo и текущий контроль эффективности этиотропной терапии

Определение чувствительности Т. vaginalis к метронидазолу in vivo проводится с помощью метода, основанного на установлении сроков исчезновения паразитов из исследуемого материала у больных трихомониазом на фоне этиотропной терапии. Паразитологические исследования материала проводят на 1,3, 5 и 7-й дни с момента начала лечения. Лекарственно-чувствительными считаются штаммы, которые перестают выделяться от больных на 2-5-е сутки с момента начала этиотропной терапии.

Нативные препараты готовятся и исследуются сразу же после взятия материала. Если это невозможно, материал помещается в питательную среду, обеспечивающую кратковременное сохранение трихомонад, из расчета 1 мл исследуемого материала на 5 мл среды. Материал должен быть доставлен в лабораторию в теплом виде, сроки доставки материала не должны превышать 2 часов.

Когда делать контрольный мазок на трихомониаз после лечения?

После завершения курса терапии нужно пройти контрольное обследование.

Оно помогает врачу оценить эффективность препаратов и состояние пациента.

В связи с тем, что основой лечения являются антибактериальные средства, то проходить диагностику стоит через 2 недели после окончания их приема.

Это поможет избежать ложноотрицательных результатов.

При получении негативных результатов анализов, можно говорить об излечении.

Показатели мазка на трихомониаз могут измениться со временем.

Это происходит при скрытом течении или низком содержании микроорганизмов на момент диагностики.

Для этого анализы повторяют через 3-6 месяцев после окончания терапии.


Когда после заражения можно сдать мазок?

ПЦР мазок трихомониаз

ПЦР – один из наиболее достоверных и часто используемых методов диагностики трихомониаза. В клиническом материале может быть обнаружена ДНК возбудителя.

Материал для исследования может быть разный.

Чаще всего используется:

  • мазок из урогенитального тракта
  • моча
  • секрет простаты

Исследование может быть качественным или количественным. Если оно качественное, результат получают двух видов: положительный или отрицательный. То есть, трихомонада в структурах урогенитального тракта или есть, или её нет. Этого достаточно для установления диагноза. Потому что трихомонада – это однозначно патогенный микроорганизм.

В норме он не должен присутствовать в структурах мочеполовой системы. Реже назначается количественное исследование. Оно позволяет определить количество копий ДНК в единице объема клинического материала.


ПЦР – один из наиболее достоверных и часто используемых методов диагностики трихомониаза. В клиническом материале может быть обнаружена ДНК возбудителя.

Диагностика

Как для мужчин, так и женщин диагностика трихомониаза выполняется с помощью врачебного осмотра пациента и лабораторных исследований. Болезнь труднее обнаружить у мужчин, чем у женщин. У женщин физическое обследование может выявить маленькие красные язвы (раны) на стенках влагалища и шейки матки. Часто в случае трихомонадного воспаления шейки матки она краснеет и опухает и при кольпоскопическом исследовании похожа по внешнему виду на клубнику.

Точный диагноз ставится после проведения микробиологического исследования – посева на трихомонады. Он основан на прямом микроскопическом исследовании мазка из влагалища или урерты и бакпосева. У женщин при гинекологическом осмотре проводится забор образца содержимого шейки матки и влагалища (за 2-3 дня до или после менструации), а также мазок из заднего свода и стен влагалища для исследований. В случае трихомониаза мочевой системы следует взять материал для исследования из мочевыводящих путей – мазок из уретры и первая утренняя проба мочи. Посев на трихомонады – метод, позволяющий выявить 95% случаев заражения трихомониазом. Но такого рода исследование можно провести только в немногих специализированных лабораториях.

Определение трихомониаза у мужчин проводится с помощью исследования слизи или мазка из уретры, содержимого из-под крайней плоти, выделений из предстательной железы, спермы и, возможно, первого утреннего образца мочи. Методы исследования под микроскопом секрета в случае мужчин позволяют установить диагноз только примерно у 30% больных, а посев выделений из уретры или первой порции мочи позволяет поставить диагноз в 60-80% случаев. При этом одновременное выполнение обоих тестов повышает диагностическую чувствительность.

Забор мазка из наружных органов мочеполовой системы не является полезным в диагностике трихомониаза.

Одним из иммунологических методов, помогающим определить антитела против трихомонад, является иммуноферментный анализ. Но с помощью определения антител невозможно проанализировать ход болезни. Это связано с тем, что антитела против трихомонад могут присутствовать в сыворотке крови (не обеспечивая иммунитет) и после успешной терапии трихомониаза.

В последние годы появились тесты для диагностики инфекции Trichomonas vaginalis, основанные на серологических методах и полимеразной цепной реакции (ПЦР). Методы, использующие молекулярные ПЦР, очень чувствительные и специфические, но относительно дорогие, и их результаты трудно интерпретировать.

С помощью ПЦР-диагностики подтверждается излеченность пациента. Проведение ПЦР-исследования рекомендуется пациентам спустя неделю после окончания применения лекарственных средств.


Симптомы трихомониаза могут исчезнуть в течение нескольких недель даже без лечения. Частота самостоятельного излечения пациента оценивается в 20-25%. Тем не менее даже люди, которые никогда не имели симптомов или у которых симптомы болезни самопроизвольно исчезли, все еще могут заразить партнера. Излечение от болезни не защищает человека от дальнейшего заражения трихомонадами.

Лечение трихомониаза: комплексное лечение

Простота строения трихомонады обманчива — это старейшие бактерии, сосуществующие с человеком миллионы лет. Этим обусловлена их устойчивость к лекарствам. Лечение трихомониаза назначается врачом индивидуально для каждого пациента, на основе результатов его обследования. Оздоровительный курс должен проходить комплексно, в три этапа, и до полного выздоровления, иначе болезнь, через некоторое время, сможет проявить себя снова. Обязателен контроль излеченности.

  • Для лечения инфекции используются противомикробные препараты, принимающиеся перорально или внутривенно. В некоторых случаях требуется совмещенный прием препаратов в различных формах для оказания локального и общего воздействия.
  • При употреблении сильнодействующих антибиотиков у женщин может развиться молочница, гинеколог должен учитывать это и при необходимости назначить вагинальные свечи для борьбы с грибком и специальные препараты содержащие молочнокислые бактерии. Препараты могут назначаться в форме свечей или растворов для спринцевания.
  • Лечение обязательно дополняют местным лечением: тампонами, ванночками, инсталляциями уретры и мочевого пузыря, свечами.
  • В случаях острой формы, курс лечения требует дополнительных процедур, таких как массаж предстательной железы , физио- и иммунотерапия, инстилляция мочевого канала. В любом случае нельзя заниматься самолечением.

Общий курс лечения длится от 2 недель до 1 месяца, в зависимости от эффективности подобранных препаратов и состояния иммунитета пациента. Ни в коем случае нельзя заниматься самолечением. Ошибка в выборе лекарственного средства и недостаточная дозировка приведут к стимуляции иммунитета у бактерий на используемые препараты, что в дальнейшем, только усложнит лечение.

Если у пациента есть постоянный половой партнер, ему также стоит пройти обследование у специалиста и при необходимости пройти курс лечения.

Наиболее верным способом обнаружения трихомонад, будет прохождение нескольких этапов проверки.

Добавить комментарий